Esterilizar una solución termolabil

Esterilizar una solución termolabil

Las soluciones termolábiles se esterilizan por

Los instrumentos utilizados para la cirugía de roedores son delicados y suelen estar diseñados para una función específica. El uso incorrecto de estos instrumentos los dañará y dificultará, si no imposibilitará, su uso correcto. Por ejemplo, las pinzas hemostáticas están diseñadas para agarrar y sujetar tejidos como vasos sanguíneos o piel. Aunque pueden utilizarse para sujetar una aguja para suturar en una emergencia, no se recomienda el uso rutinario de pinzas hemostáticas en lugar de un portaagujas quirúrgico. Estas pinzas no están diseñadas para sujetar de forma segura la aguja y su uso para suturar dañará las puntas haciéndolas inútiles para su propósito. Los instrumentos también deben ser del tamaño adecuado para la cirugía de roedores. El uso de instrumentos demasiado grandes exagerará los movimientos de la mano y disminuirá la precisión quirúrgica, lo que dará lugar a una técnica deficiente y a un mayor traumatismo de los tejidos.
Se ha informado de que el uso repetido de esterilizadores de perlas de vidrio hará que los instrumentos se vuelvan quebradizos y sin brillo con el tiempo. Cualquier instrumento que se utilice con frecuencia, se manipule de forma brusca o se limpie con materiales abrasivos puede dañarse o embotarse. Los instrumentos deben evaluarse periódicamente y sustituirse cuando sea necesario. Las tijeras y otros instrumentos afilados pueden reafilarse a veces para prolongar su vida útil. Los instrumentos deben limpiarse suavemente después de cada uso para asegurarse de que se elimina toda la sangre y el tejido. Un limpiador ultrasónico puede ayudar en este proceso. Un cuidado adecuado prolongará la vida de sus instrumentos y ayudará a preservar su inversión.

Los materiales termolábiles se esterilizan

La esterilización se utiliza, entre otras cosas, para hacer que objetos como implantes, suturas, clips quirúrgicos, ropa e instrumentos sean adecuados para aplicaciones médicas. La esterilización consiste en la eliminación de los microorganismos, incluidas las esporas bacterianas, presentes en el objeto a esterilizar.
En la esterilización por vapor convencional, el material a esterilizar se coloca en un autoclave, se introduce vapor y/o agua con la que se calienta el autoclave. Para que la esterilización sea eficaz y reproducible, se suele utilizar un método de introducción de vapor saturado mediante generadores de vapor de presión controlada. Al aumentar la presión, se consigue un aumento de la temperatura. El vapor se condensa en el material a esterilizar, ya que éste tiene una temperatura más baja y cede una cantidad de calor a dicho material. El autoclave se mantiene a esta temperatura y presión durante un tiempo, el tiempo de esterilización. Esto se describe, por ejemplo, en las Directrices de Esterilización y Esterilidad, Samson Uitgeverij B.V., Alphen a / d Rijn, 1989. Para lograr una esterilización eficaz, todas las superficies del material deben estar en contacto con el vapor saturado al menos durante el tiempo de esterilización. Una consecuencia de este método es que el material está expuesto al agua condensada durante bastante tiempo.

¿con qué método se esterilizan las sustancias termolábiles?

Radiación ionizanteLa esterilización por radiación ionizante, principalmente por rayos gamma de cobalto 60 o aceleradores de electrones, es un método de esterilización a baja temperatura que se ha utilizado para una serie de productos médicos (por ejemplo, tejidos para trasplantes, productos farmacéuticos, dispositivos médicos). No existen procesos de esterilización por radiación ionizante autorizados por la FDA para su uso en instalaciones sanitarias. Debido a los elevados costes de esterilización, este método es una alternativa desfavorable a la esterilización por ETO y plasma en los centros sanitarios, pero es adecuado para la esterilización a gran escala. Algunos efectos nocivos en el equipo de atención al paciente asociados a la radiación gamma incluyen la oxidación inducida en el polietileno 915 y la delaminación y el agrietamiento en los cojinetes de rodilla de polietileno916. Para más detalles, se pueden consultar varias revisiones 917, 918 que tratan de las fuentes, los efectos y la aplicación de la radiación ionizante.
Esterilizadores de calor secoEste método debe utilizarse sólo para materiales que puedan ser dañados por el calor húmedo o que sean impenetrables al calor húmedo (por ejemplo, polvos, productos de petróleo, instrumentos afilados). Las ventajas del calor seco son las siguientes: no es tóxico y no daña el medio ambiente; una cabina de calor seco es fácil de instalar y tiene unos costes de funcionamiento relativamente bajos; penetra en los materiales; y no es corrosivo para el metal y los instrumentos afilados. Las desventajas del calor seco son la lentitud de la penetración del calor y la eliminación de los microbios, lo que hace que sea un método que requiere mucho tiempo. Además, las altas temperaturas no son adecuadas para la mayoría de los materiales919. Las relaciones tiempo-temperatura más comunes para la esterilización con esterilizadores de aire caliente son 170°C (340°F) durante 60 minutos, 160°C (320°F) durante 120 minutos y 150°C (300°F) durante 150 minutos.  Las esporas de B. atrophaeus deben utilizarse para controlar el proceso de esterilización por calor seco porque son más resistentes al calor seco que las esporas de G. stearothermophilus. Se considera que el principal proceso letal es la oxidación de los componentes celulares.

Esterilización por calor seco

La esterilización del material de laboratorio es esencial en los estudios microbiológicos. Los métodos más comunes que se han utilizado de forma rutinaria para esterilizar material de vidrio y metal son el calor seco (160-180ºC) y el vapor de agua en autoclave a 121-134ºC.
La esterilización gaseosa se utiliza para esterilizar sustancias termolábiles como las placas de Petri de plástico. El material de plástico es termolábil y suele ser desechable; sin embargo, puede reutilizarse tras la esterilización con óxido de etileno u óxido de propileno a temperatura ambiente.
Los medios de cultivo y las colonias de hongos, en placas de Petri de plástico (de 6 o 9 mm de diámetro) o en cajas de acrílico (de 11 x 11 x 2,5 cm de altura), se retiraron raspando con una espátula de plástico, se lavaron con agua más detergente utilizando una esponja suave, se enjuagaron y se dejaron secar en la mesa del laboratorio.
Se utilizó formaldehído [(CH2O)3] (aldehído fórmico) como agente químico de esterilización. El producto químico («Formol 37%», Quimicamar, Cachoeirinha -RS) se pipeteó (50 mL) en un Erlenmeyer de 250mL de volumen sobre una bola de algodón que estaba dentro del matraz y absorbió el producto químico. A continuación, el matraz se colocó entre los platos/germinales en el fondo de una bolsa de plástico. Como el líquido se convierte en gas y requiere una determinada concentración para esterilizar el material, se utilizó una bolsa de plástico para evitar el escape de vapor. Cada lote constaba de 100 platos individuales de 6 mm de diámetro, o 50 platos individuales de 9 mm, y/o 50 gerboxes. La bolsa se cerró herméticamente con una banda de goma y se mantuvo en un ambiente a temperatura > 20ºC durante 48 horas. Tras ese tiempo de exposición al vapor, la bolsa de plástico se abrió parcialmente para liberar el vapor restante en una campana de humos durante 12 horas. La bolsa se cerró de nuevo con la banda elástica y quedó lista para ser utilizada o almacenada.

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